体外培育的原代细胞或细胞株要在体外持续地培育就必须传代,以便获得稳定的细胞株或得到很多的同种细胞,并维持细胞种的连续。培育的细胞形成单层集合今后,由于密度过大生存空间缺乏而引起养分枯竭,将培育的细胞分散,从容器中取出,以1:2 或l:3 以上的比率搬运到另外的容器中进行培育,即为传代培育。
细胞“一代”指从细胞接种到别离再培育的一段期间,与细胞世代或倍增不同。在一代中,细胞培增3~6 次。
细胞传代后,一般通过三个阶段:游离期、指数增生期和停止期。常用细胞割裂指数表示细胞增殖的旺盛程度,即细胞群的割裂相数/100 个细胞。一般细胞割裂指数介于0.2%~0.5%,肿瘤细胞可达3~5%。
细胞接种2~3 天割裂增殖旺盛,是生机的好时期,称指数增生期(对数成长期),适合进行各种试验。
一:传代细胞培育简介
广义的传代细胞培育一般包括复苏、换液、传代、冻存四个环节,是基本、常用的细胞培育技能。
传代培育是使用培育细胞进行各种试验的必通进程,同时也是一种将细胞种保存下去的办法,广泛应用于生命科学基础研究和生物医药产业。狭义的传代细胞培育只是指传代进程。
二:传代细胞培育原理
细胞在培育瓶长成致密单层后,已基本上饱和,为使细胞能持续成长,同时也将细胞数量扩展,就必须进行传代(再培育)。悬浮型细胞直接分瓶就可以,而贴壁细胞需经消化后才干分瓶。
三:传代细胞培育过程
1、复苏
(1)取适量培育液参加离心管中;
(2)将冻存的细胞在37℃水浴中快速使其消融;
(3)将细胞吸入离心管中,1000rpm/min离心5 min,倒去上清液,规定参加培育液,打匀,搬运到培育瓶中,即可。
2、换液
(1)将培育瓶中已变色的培育液倒掉;
(2)用PBS洗刷培育瓶(从没有细胞的一侧倒掉);
(3)参加新鲜培育液,即可。
3、传代
(1)吸除培育瓶内旧培育液,参加适量PBS洗一次。
(2)向瓶内参加胰蛋白酶和EDTA混合液少量,以能覆满瓶底为限。
(3)置温箱中2~5分钟,当发现细胞质回缩,细胞空隙增大后,当即停止消化。
(4)吸除消化液,向瓶内注入Hanks液数毫升,轻轻滚动培育瓶,把残余消化液冲掉。留意加Hanks液冲刷细胞时,动作要轻,以免把已松动的细胞冲掉流失。如果细胞已脱离瓶底,则直接参加培育液停止消化。
(5)用吸管汲取培育液轻轻重复吹打瓶壁细胞,使之从瓶壁脱离形成细胞悬液。
(6)计数板计数后,把细胞悬液分成等份分装入数个培育瓶中,置温箱中培育。或许按照所购买公司推荐的比例传代。
4、冻存
(1)预先配制冻存液:10 % DMSO + 90%胎牛血清,4℃冰箱保存预冷;
(2)将培育瓶中已变色的培育液倒掉;用适量PBS洗刷一次培育瓶;
(3)参加胰酶,静置,待细胞将脱落时,参加适量培育液,将贴壁细胞吹落,吸入到离心管中,1000rpm/min×3min,倒掉上清液,参加1ml冻存液,轻轻吹打成细胞悬液,吸到冻存管中,密封,标记冻存细胞名称和冻存日期。
(4)放入细胞程序降温盒中,于-80℃冻存过夜。然后搬运氮中,长期保存。